通用RNA提取試劑盒
産品組分
貨号 |
R1051(50 次) |
溶液 RL |
60 ml |
溶液 RPI |
18 ml |
溶液 RW |
12 ml |
DEPC處理水 |
10 ml |
RNase-free 純化柱 |
50 個(gè) |
RNase-free 離心管 |
50 個(gè) |
說(shuō)明書 |
1 份 |
需要(yào / yāo)自備的(de)溶液
● 氯仿
● 無水乙醇
産品說(shuō)明
通用RNA提取試劑盒是(shì)經過改進開發的(de)新一(yī / yì /yí)代産品,提高了(le/liǎo)裂解液的(de)裂解能力和(hé / huò)提取的(de)靈敏度,通過在(zài)特定适宜的(de)條件下特異、可逆地(dì / de)結合RNA,而(ér)各種蛋白質和(hé / huò)其他(tā)雜質均可被去除掉,同時(shí)改進的(de)矽基質膜增強了(le/liǎo)對RNA的(de)吸附能力,得到(dào)的(de)RNA純度更好,質量更高。該試劑盒可從各種細胞或組織中快速提取總RNA,每個(gè)吸附柱每次可處理50–100 mg 組織或5×106 細胞,可同時(shí)處理大(dà)量不(bù)同樣品,一(yī / yì /yí)個(gè)小時(shí)内即可完成反應。提取的(de)總RNA沒有DNA和(hé / huò)蛋白的(de)污染,可用于(yú)Northern blot、Dot blot、polyA 篩選、體外翻譯、RNase保護分析和(hé / huò)分子(zǐ)克隆等。
保存條件
溶液RL應在(zài)2-8℃避光保存,其他(tā)溶液和(hé / huò)純化柱室溫保存。
注意事項---------------------------------------------------------------------------------------------------------
● 初次使用溶液RPI和(hé / huò)溶液RW前,需按比例加入無水乙醇。18 ml溶液RPI中加入12 ml無水乙醇(3:2),12 ml溶液RW中加入48 ml無水乙醇(1:4)。
● 嚴防操作環境、使用的(de)容器、耗材和(hé / huò)試劑的(de)RNase污染。操作過程中勤換手套。
● 使用本産品提取的(de)RNA一(yī / yì /yí)般不(bù)含有DNA污染。在(zài)極少數情況下(與組織pH值等相關),如果有DNA污染而(ér)又必須去除,則可以(yǐ)用RNase-free的(de)DNase處理樣品。
● 請嚴格遵照操作步驟操作。
● 不(bù)同起始材料的(de)用量及溶液RL的(de)用量不(bù)同(參見下表),過多或過少的(de)使用量都可能影響RNA的(de)質量或産量。若起始材料量很少,RNA預計産量很低,在(zài)異丙醇沉澱時(shí),可加入20mg/ml的(de)肝糖原溶液0.5-1 μl促進RNA沉澱。
樣品用量 |
溶液RL的(de)用量 |
10cm2的(de)貼壁培養細胞 |
1 ml |
107的(de)懸浮培養細胞 |
1-2 ml |
100 μl的(de)白細胞 |
2 ml |
50-100 mg的(de)普通組織樣品 |
1 ml |
50-100 mg的(de)特殊組織樣品(肝、脾、骨及軟骨等) |
2 ml |
15-30 mg的(de)植物材料(多糖和(hé / huò)多酚含量不(bù)高的(de)) |
1 ml |
● 有關RNA的(de)吸光度說(shuō)明如下:
260nm、320nm、230nm、280nm下的(de)吸光度分别代表核酸、背景(溶液渾濁度)、鹽濃度和(hé / huò)蛋白質等有機物的(de)污染程度,質量較好的(de)RNA的(de)R值應在(zài)1.8-2.0之(zhī)間,當R<1.8時(shí),溶液中的(de)蛋白質等有機物的(de)污染比較明顯;當>2.2時(shí),說(shuō)明RNA已經被水解成單核苷酸。
● RNA濃度=(OD260-OD320)*稀釋倍數*0.04 μg/μl。
操作步驟---------------------------------------------------------------------------------------------------------
第一(yī / yì /yí)次使用前應在(zài)溶液 RPI、溶液 RW中加入無水乙醇,加入量請參見瓶上(shàng)标簽。
1. 樣品處理
● 組織:将組織在(zài)液氮中磨碎。每50–100 mg組織加1 ml溶液RL,用勻漿儀進行勻漿處理。樣品體積不(bù)應超過溶液RL體積的(de)十分之(zhī)一(yī / yì /yí)。
● 單層培養細胞:直接在(zài)培養闆中加入溶液RL裂解細胞,每10 cm2 面積加1 ml溶液RL。用取樣器抽打幾次。
● 溶液RL的(de)加入量根據培養瓶面積決定,不(bù)是(shì)由細胞數決定。如果加量不(bù)足,可能導緻提取的(de)RNA中有DNA污染。
c. 細胞懸液:離心取細胞,棄上(shàng)清。每5–10×106動物細胞和(hé / huò)植物細胞加入1 ml溶液RL。加溶液RL前不(bù)要(yào / yāo)洗滌細胞,以(yǐ)免降解mRNA。
2. 将勻漿樣品在(zài)15–30℃放置5 min,使得核酸蛋白複合物完全分離。
3. 可選步驟:4℃ 12,000 rpm (~13,400×g) 離心5分鍾,取上(shàng)清,轉入一(yī / yì /yí)個(gè)新的(de)無RNase的(de)離心管中。
● 如果樣品中含有較多蛋白、脂肪、多糖或肌肉、植物結節部分等,可加此步驟離心去除。離心得到(dào)的(de)沉澱中包括細胞外膜、多糖、高分子(zǐ)量DNA,RNA存在(zài)于(yú)上(shàng)清溶液中。
(如樣品含有較多多糖多酚,請增加以(yǐ)下步驟,在(zài)上(shàng)清液中加入0.2×上(shàng)清液體積的(de)5 M NaCl及1×上(shàng)清液體積的(de)酚/氯仿(1:1),混勻,12000 rpm 離心5-10 min ,取上(shàng)清液加入等體積氯仿,混勻,12000 rpm 離心5-10 min,至第4步。)
4. 加入200 μl氯仿,蓋好管蓋,劇烈振蕩15 s,室溫放置3 min。
5. 4℃ 12,000 rpm離心10 min,樣品會分成三層,從上(shàng)至下依次是(shì):無色的(de)水相,白色的(de)中間層和(hé / huò)黃色的(de)有機相,RNA主要(yào / yāo)存在(zài)于(yú)水相中,水相的(de)體積約爲(wéi / wèi)所用溶液RL試劑的(de)60%。把水相轉移到(dào)新管中,進行下一(yī / yì /yí)步操作。注意不(bù)要(yào / yāo)吸到(dào)中間層。
● 第一(yī / yì /yí)次使用前應在(zài)溶液 RPI、溶液RW中加入無水乙醇,加入量請參見瓶上(shàng)标簽。
6. 緩慢加入0.5 倍體積無水乙醇,混勻(此時(shí)可能會出(chū)現沉澱)。将得到(dào)溶液和(hé / huò)沉澱一(yī / yì /yí)起轉入純化柱中,4℃ 12,000 rpm離心30 s。4℃ 12,000 rpm離心30 s,棄掉收集管中的(de)廢液。
● 若溶液體積大(dà)于(yú)純化柱容積(700 μl),可分兩次離心。
7. 向純化柱中加入500 μl溶液RPI(使用前請先檢查是(shì)否已加入乙醇),4℃ 12,000 rpm離心30 s,棄廢液。
8. 向純化柱中加入500 μl溶液RW(使用前請先檢查是(shì)否已加入乙醇),室溫靜置2 min, 4℃ 12,000 rpm離心30 s,棄廢液。
9. 向純化柱中加入500 μl溶液RW,室溫靜置2分鍾,4℃ 12,000 rpm離心30 s,去除殘餘液體。
10. 将純化柱放入2ml收集管中,4℃ 12,000 rpm離心2 min,去除殘餘液體。
● 此步驟的(de)目的(de)是(shì)将純化柱中殘餘的(de)漂洗液去除,離心後将純化柱在(zài)室溫放置片刻,或置于(yú)超淨工作台上(shàng)通風片刻,以(yǐ)充分晾幹。如果有漂洗液殘留,可能會影響後續的(de)RT等實驗操作。
11. 将純化柱轉入一(yī / yì /yí)個(gè)新的(de)離心管中,加30–100 μl RNase-free ddH2O,室溫放置2 min,4℃ 12,000 rpm離心2 min。
● 洗脫緩沖液體積不(bù)應少于(yú)30 μl,體積過小影響回收效率。且RNA應保存在(zài)-70℃(-80℃),以(yǐ)防降解。
● 如果想提高RNA得率,可重複上(shàng)步操作一(yī / yì /yí)次,合并兩次得到(dào)的(de)溶液。